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    Taq SYBR® Green qPCR Premix (通用型)

    产品货号:R0202

    储存条件:长期保存请于 -20℃避光保存,Mix 融解后可在 4℃避光条件下稳定存放一个月,尽量避免反复冻融。

    2x Realab Green PCR Fast mixture通用型产品简介

    Taq SYBR® Green qPCR Premix 是 SYBR® Green I 嵌合染料法专用qPCR试剂,为2×预混液,包含除引物和某~某样品以外的所有qPCR组分,可减少操作步骤,缩短加样时间,降低污染几率。其核心组分是经抗体修饰的热启动Taq 某~某聚合酶,配合精心优化的Buffer体系以及PCR反应促进因子,使产品具有特异性强、扩增效率高等特点,有效抑制非特异性扩增,可对宽广浓度范围的模板进行准确定量,获得稳定可靠的qPCR结果。

    2x Realab Green PCR Fast mixture通用型使用方法:

    1.适配机型

    全机型通用

    2.使用注意

    ① 因Mix中预混有染料,其保存或反应体系配制过程应避免强光照射;

    ② 使用前上下颠倒轻轻混匀Mix,请勿涡旋振荡混匀,避免产生过多气泡。

    3.建议的qPCR反应体系

    试剂

    使用量

    终浓度

    Taq SYBR® Green qPCR Premix

    10ul

    正向引物 (10uM)a

    0.4ul

    0.2uM

    反向引物(10uM)a

    0.4ul

    0.2uM

    某~某模板b

    X ul

    10~200 ng/20ul

    Nuclease-Free Water

    To 20ul


    a.调通推荐的引物终浓度为0.2uM,反应效果不佳时可在0.1~1uM范围内进行调整;

    b.推过荐模板加样量的为1~2ul,如模板类型为未稀释c某~某原液,模板添加量不应超过总反应体系的10%,不同种类某~某模板中含有的靶基因拷贝数目不同,必要时可进行梯度稀释,以确定必要的某~某模板添加量。

    4.qPCR 反应程序(可根据机型适当调整)

    两步法:

    2x Realab Green PCR Fast mixture通用型

    三步法:

    2x Realab Green PCR Fast mixture通用型

    a.根据引物的Tm值进行退火&延伸(退火)温度的设定;若扩增片段在200bp以内,退火&延伸(延伸)时间可以设置为15sec;此外,退火&延伸(延伸)时间的设置还需根据您使用的qPCR仪所需的最短数据采集时间自行调整;

    b.不同 qPCR 仪的熔解曲线采集程序有差别,一般可使用仪器默认的熔解曲线采集程序。

    5.实验优化

    若使用默认反应条件反应性能不佳时,则需要进行反应条件的优化,可以从引物浓度以及扩增程序两个方面进行:

    ① 引物浓度调整

    当引物终浓度在0.1~1.0uM范围之间变化时,引物浓度越低,扩增特异性越高,但扩增效率会有所下降。

    ② 扩增程序优化

    需提高扩增特异性,可使用两步法程序或提高退火温度;需提高扩增效率,可使用三步法程序或延长延伸时间。

    6.引物设计原则

    ① 扩增产物长度建议控制在80~200bp;

    ② 引物长度为18~25bp;

    ③ 正向引物和反向引物的Tm值相差不超过 1℃为佳,Tm值控制在58~62℃为佳;

    ④ 引物的GC含量控制在 40%~60% 之间;

    ⑤ 引物A、G、C、T整体分布尽量要均匀,避开T/C或者A/G的连续结构(特别是3'端);

    ⑥ 引物3'端zuihou一个碱基zuihao为G或者C;

    ⑦ 避开引物内部或者两条引物之间的互补序列;

    ⑧ 使用NCBI BLAST功能检索确认引物的特异性。


    问题描述

    可能原因

    解决办法

    扩增曲线不光滑

    荧光信号太弱,经系统校正后产生

    确保Mix中预混的染料未降解;更换荧光信号收集更好的qPCR专用耗材

    扩增曲线断裂或下滑

    模板浓度较高,基线的终点值大于Cq 值

    减小基线终点(Cq-4),重新分析数据

    个别孔扩增曲线突然骤降

    反应管内留有气泡

    确保Mix*溶解,请勿涡旋振荡混匀

    加样完成后轻弹离心去除气泡

    延长预变性时间至10min,以去除气泡


    反应结束无扩增曲线出现

    反应循环数偏少

    设置循环数为40,但更多的循环数会增加过多的背景信号

    荧光信号采集步骤未设置或者设置错误

    两步法扩增程序一般将信号采集设置在退火&延伸阶段,三步法扩增程序应当将信号采集设置在72℃延伸阶段

    引物可能降解

    长期未用的引物,应先通过PAGE电泳检测完整性,以排除其降解的可能

    模板浓度过低

    减少模板稀释倍数重复实验,样品浓度未知的情况下先从higest浓度做起

    模板降解

    重新制备模板,重复实验


    Cq 值出现过晚

    扩增效率低

    提高引物浓度,尝试三步法扩增程序,或者重新设计引物

    模板浓度过低

    减少模板稀释倍数重复实验,样品浓度未知的情况下先从GAO浓度做起

    模板降解

    重新制备模板,重复实验

    扩增产物过长

    扩增产物长度控制在80~200 bp

    体系中存在 PCR 抑制剂

    一般为模板带入,加大模板稀释倍数或重新制备纯度高的模板重复实验


    空白对照出现信号

    反应体系污染

    首先更换空白对照的水,如果还发生同样情况,继续更换引物、吸头、PCR

    管或启用新的Mix;反应体系在超净工作台内配制,减少气溶胶污染

    出现引物二聚体等非特异性扩增

    一分般析在 35 循环以后空白对照出现扩增产物属正常情况,应配合熔解曲线进行重新设计引物,调整引物浓度或优化PCR反应程序


    熔解曲线出现多峰

    引物设计不佳

    根据引物设计原则重新设计新引物

    引物浓度过高

    适当降低引物浓度

    c某~某 模板存在基因组污染

    提取后的RNA溶液使用某~某酶进行消化,例如:dsDNase,以去除基因组污染,或设计跨内含子引物


    实验重复性差

    加样误差大

    使用精准的移液器、配合高品质吸头准确移液

    高倍稀释模板,加入大体积模板减少加样误差

    放大qPCR反应体积

    模板浓度过低

    减少模板稀释倍数重复实验

    qPCR仪不同位置的温度偏差

    定期校准qPCR仪







     


    更多详情:
    http://www.lablead.com.cn/SonList-2377345.html
    https://www.chem17.com/st534943/product_37140546.html


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